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dc.contributor.advisorEstrada Muñoz, Norma Angelica
dc.contributor.advisorRojas Arzaluz, Mario
dc.contributor.authorMendoza Avilés, Ismael
dc.date.issued2026
dc.identifierhttps://cibnor.repositorioinstitucional.mx/jspui/handle/1001/3226
dc.identifier.urihttp://dspace.cibnor.mx:8080/handle/123456789/3449
dc.description.abstract"La Enfermedad de Necrosis Hepatopancreática Aguda (AHPND por sus siglas en inglés) representa una de las principales problemáticas en la acuicultura del camarón, causando altas mortalidades y pérdidas económicas significativas. Esta enfermedad es provocada por cepas de Vibrio parahaemolyticus que portan el plásmido pVA1, el cual codifica las toxinas PirA y PirB, responsables del daño en el hepatopáncreas. Debido a las limitaciones asociadas al manejo de cepas patógenas, la expresión heteróloga en Escherichia coli constituye una alternativa segura para su estudio. El objetivo del presente estudio es producir de manera recombinante las toxinas PirA y PirB de V. parahaemolyticus utilizando E. coli como sistema de expresión heterólogo. En este trabajo se logró la expresión de las toxinas recombinantes Pir AVP y Pir BVP en E. coli BL21 mediante los vectores pCOLDI y pET28a. Las construcciones genéticas se confirmaron mediante la purificación del ADN plasmídico y la electroforesis en gel de agarosa. La expresión proteica se indujo con IPTG y se evaluó mediante SDS-PAGE, donde se observó una mayor acumulación en la fracción insoluble, lo que sugiere la formación de cuerpos de inclusión. La identidad de las proteínas se confirmó mediante Western blot con anticuerpos anti-His-Tag. Finalmente, las proteínas se purificaron mediante cromatografía de afinidad con Ni-sefarosa. Los resultados demuestran que el sistema de expresión empleado es adecuado para la producción de las toxinas Pir AVP y Pir BVP, lo que constituye una fuente confiable para estudios posteriores sobre su estructura, función y aplicaciones en el estudio, diagnóstico y control de AHPND."es
dc.formatpdfes
dc.language.isospaes
dc.publisherCentro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, S. C.es
dc.rightsAcceso abiertoes
dc.subjectAHPND, Vibrio parahaemolyticus, toxinas PirA y PirB, expresión heteróloga, Escherichia colies
dc.subjectAHPND, Vibrio parahaemolyticus, PirA y PirB toxis, heterologous expression, Escherichia colies
dc.subject.classificationProteínases
dc.titlePRODUCCIÓN DE LAS TOXINAS RECOMBINANTES PIR A Y PIR B DE Vibrio parahaemolyticus EN Escherichia coli COMO SISTEMA HETERÓLOGOes
dc.typemasterThesises
dc.dirtesis.gradoMaestro en cienciases
dc.dirtesis.disciplinaBiotecnologíaes
dc.dirtesis.universidadCentro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, S. C.es
dc.dirtesis.facultadMaestría en Ciencias en Uso, Manejo y Preservación de los Recursos Naturaleses
dc.description.abstracten"Acute Hepatopancreatic Necrosis Disease (AHPND) is a major threat to shrimp aquaculture, causing high mortality rates and substantial economic losses worldwide. The disease is associated with strains of Vibrio parahaemolyticus carrying the pVA1 plasmid, which encodes the PirA and PirB toxins responsible for the characteristic hepatopancreatic damage. Because working with pathogenic strains is subject to biosafety constraints, heterologous expression in Escherichia coli offers a practical, safer approach to studying these toxins. In this study, PirA and PirB toxins from V. parahaemolyticus were successfully expressed as recombinant proteins in E. coli BL21 using the expression vectors pCOLDI and pET28a. The presence of the constructs was confirmed by plasmid extraction and agarose gel electrophoresis. Protein expression was induced with IPTG and analyzed by SDS-PAGE, which showed greater accumulation in the insoluble fraction, consistent with inclusion body formation. The identity of the recombinant proteins was further confirmed by Western blot using anti-His tag antibodies. Purification was achieved by Ni-sepharose affinity chromatography. Overall, the expression system proved effective in producing Pir AVP and Pir BVP, providing a reliable source of these toxins for future studies on their structure, function, and potential applications in AHPND research, diagnosis, and control."es


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