Mostrar el registro sencillo del ítem

dc.contributor.advisorValdivia Carrillo, Tania
dc.contributor.advisorValenzuela Quiñonez, Fausto
dc.contributor.authorCampa Molina, Angel Isidro
dc.date.issued2026
dc.identifierhttps://cibnor.repositorioinstitucional.mx/jspui/handle/1001/3122
dc.identifier.urihttp://dspace.cibnor.mx:8080/handle/123456789/3344
dc.description.abstract"Totoaba macdonaldi es una especie endémica del Golfo de California en peligro de extinción, cuya conservación requiere herramientas eficaces para su monitoreo no invasivo. Una alternativa novedosa es el uso de ADN ambiental (eDNA, por sus siglas en inglés) combinado con técnicas moleculares como la PCR cuantitativa (qPCR, por sus siglas en inglés) ofrece una alternativa sensible para detectar su presencia en cuerpos de agua sin necesidad de capturar individuos. Esta tesis tuvo como objetivo diseñar y validar un ensayo molecular especie-específico para la detección de T. macdonaldi mediante pruebas de PCR convencional (cPCR, por sus siglas en inglés) y PCR cuantitativa (qPCR). La validación se desarrolló en tres fases: in silico, in vitro e in situ. En la fase in silico se diseñaron seis pares de cebadores (primers) dirigidos a genes mitocondriales de T. macdonaldi (COI, 12S, CytB, NADH4 y región control). En la fase in vitro mediante cPCR el par SpecTo F1-R2 mostró la mayor especificidad, aunque la presencia de dímeros impidió su estandarización. Posteriormente, en la fase de qPCR se evaluaron la especificidad, eficiencia y sensibilidad de los ensayos, logrando estandarizar tres pares de cebadores (Tma09, Tma10 y Tma13) con eficiencias de 95.2 %, 93.6 % y 100.3 %, coeficientes de determinación R² = 0.997, 0.995 y 0.982 (respectivamente), y límites de detección (LOD, por sus siglas en inglés) y cuantificación (LOQ, por sus siglas en inglés) de 8.95X101, 7.7 X100 y 6.9X101 copias/µL, respectivamente. En varios ensayos se detectó co-amplificación con Cynoscion othonopterus, aunque las secuencias obtenidas en muestras artificiales confirmaron amplificación exclusiva de T. macdonaldi en los cebadores Tma09 y Tma10, evidenciando amplificación preferencial hacia la especie objetivo. En la fase in situ, se demostró capacidad para detectar ADN de T. macdonaldi en muestras de agua de estanques y eDNA artificial. Aunque los resultados son alentadores, se reconoce como limitación pendiente la validación en muestras de eDNA marino ambiental. Este trabajo sienta las bases para el desarrollo de herramientas moleculares aplicables al monitoreo de especies acuáticas en riesgo y destaca la necesidad de ampliar las bases de datos genéticas locales para mejorar la especificidad de futuros ensayos. Este trabajo es un primer paso hacia el desarrollo de una herramienta molecular validada para la detección específica de T. macdonaldi."es
dc.formatpdfes
dc.language.isospaes
dc.publisherCentro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, S. C.es
dc.rightsAcceso abiertoes
dc.subjectvalidación, barcoding, ensayo de detección, qPCR, totoaba, eDNAes
dc.subjectvalidation, barcoding, detection assayes
dc.subject.classificationLocalización de peceses
dc.titleELABORACIÓN Y VALIDACIÓN DE UNA HERRAMIENTA MOLECULAR PARA LA DETECCIÓN DE Totoaba macdonaldies
dc.typemasterThesises
dc.dirtesis.gradoMaestro en cienciases
dc.dirtesis.disciplinaBiología Marinaes
dc.dirtesis.universidadCentro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, S. C.es
dc.dirtesis.facultadMaestría en Ciencias en Uso, Manejo y Preservación de los Recursos Naturaleses
dc.description.abstracten"Totoaba macdonaldi is an endemic species of the Gulf of California, currently listed as endangered, whose conservation requires effective, non-invasive monitoring tools. The use of environmental DNA (eDNA) combined with molecular techniques, such as quantitative PCR (qPCR), offers a sensitive alternative for detecting its presence in water bodies without the need to capture individuals. This thesis aimed to design and validate a species-specific molecular assay for the detection of T. macdonaldi using conventional PCR (cPCR) and quantitative PCR (qPCR). Validation was carried out in three phases: in silico, in vitro, and in situ. In the in silico phase, six primer pairs targeting mitochondrial genes (COI, 12S, CytB, NADH4, and the control region) were designed; the SpecTo F1-R2 pair showed the highest theoretical specificity, although dimer formation prevented its standardization. In the in vitro phase, the specificity, efficiency, and sensitivity of the assays were evaluated, successfully standardizing three primer pairs (Tma09, Tma10, and Tma13) with efficiencies of 95.2 %, 93.6 %, and 100.3 %, coefficients of determination R² = 0.997, 0.995, and 0.982, and detection (LOD) and quantification (LOQ) limits of 8.95X101, 7.7 X100 and 6.9X101 copies/µL, respectively. Co-amplification with Cynoscion othonopterus was observed in several assays; however, sequences obtained from artificial eDNA samples confirmed the exclusive amplification of T. macdonaldi with primers Tma09 and Tma10, indicating preferential amplification of the targeted species. In the in situ phase, the assay successfully detected T. macdonaldi DNA in an aquaculture pond water and artificial eDNA samples. Although results are promising, further validation with marine environmental eDNA samples remains pending. This study lays the foundation for the development of molecular tools to monitor threatened aquatic species and underscores the need to expand local genetic reference databases to enhance the specificity of future assays. Overall, this work represents an important first step toward a validated molecular assay for the specific detection of T. macdonaldi."es


Ficheros en el ítem

Thumbnail

Este ítem aparece en la(s) siguiente(s) colección(ones)

Mostrar el registro sencillo del ítem